Порядок выполнения работы
1. Внимательно изучите принцип работы и устройство микроскопа.
Рис. 3.6. Внешний вид микроскопа CME: 1 – устройство наведения на резкость, грубая фокусировка; 2 – устройство наведения на резкость, точная фокусировка; 3 – винт изменения высоты положения конденсора; 4 – регулятор яркости освещения; 5 – полевая диафрагма; 6 – осветитель; 7 – апертурная диафрагма; 8 – конденсор Аббе; 9 – револьвер с объективами; 10 – предметный столик с препаратоводителем; 11 – кнопка включения/выклюючения; 12 – ручка перемещения предметного столика; 13 – тубус; 14 – окуляры; 15 – штатив; 16 – объектив
Порядок работы с микроскопом СМЕ
2. Установите микроскоп предметным столиком к себе.
3. Включите питание кнопкой включения 11 и установите комфортную интенсивность освещения, медленно поворачивая регулятор яркости освещения 4.
4. Опустите предметный столик 10, пользуясь винтом грубой фокусировки 1 и винтом точной фокусировки 2 наведите резкость на препарат.
5. Раздвиньте окуляры 14 в стороны до упора. Посмотрите в них и, передвигая, установите на нужном расстоянии для Ваших глаз, чтобы Вы могли видеть одно ясное изображение для обоих глаз (это будет вашим персональным расстоянием между зрачками), запомните это расстояние, указанное на шкале визуальной насадки.
6. Глядя в микроскоп, закройте полевую диафрагму 5, вращая наружный рифленый лимб по часовой стрелке.
7. Пользуясь винтом настройки высоты конденсора 3, переведите его в положение, при котором в поле зрения резко наблюдаются края полевой диафрагмы (правильный многоугольник). Зафиксируйте выбранное положение конденсора, закрутив до упора винт конденсора.
8. Отцентрируйте изображение диафрагмы осветителя. Лучше это выполнять, работая двумя руками, смещая диафрагму в направлении к центру 5. После завершения операции центрирования, полностью откройте полевую диафрагму. При переходе к другим объективам возможно проведение дофокусировки с помощью винта точной фокусировки 2 и настройки яркости освещения 4.
9. Положите на предметный столик приготовленный препарат покровным стеклом вверх, чтобы объект находился в центре отверстия предметного столика.
10. Затем под контролем зрения медленно опустите тубус 13 с помощью винта грубой фокусировки 1 пока в поле зрения не появится изображение объекта исследования.
11. Для того, чтобы перейти к рассмотрению объекта при большом увеличении микроскопа необходимо вначале отцентрировать препарат, т. е. поместить объект в самый центр поля зрения с помощью винтов препаратоводителя 10. Если объект не будет центрирован, то при большом увеличении он останется вне поля зрения.
12. Вращая револьвер, приведите в рабочее положение объектив большого увеличения 16.
13. Для тонкой фокусировки используйте винт точной фокусировки 2.
14. Зарисуйте объект исследования.
Запомните, что изучение любого объекта надо начинать с малого увеличения!
Следует помнить, что при работе с микроскопом необходимо соблюдать осторожность. Нельзя без необходимости вынимать окуляры, крутить винты, особенно точной доводки. Протирать окуляры следует только мягкой тряпочкой, специально приготовленной для этой цели.
15. Приготовьте временный препарат, для этого:
– Возьмите предметное стекло, держа его за боковые грани, и положите на стол.
– Глазной пипеткой возьмите небольшое количество анализируемой воды из природного водоема. Поместите каплю воды в центр предметного стекла.
– Для замедления движения простейших необходимо в каплю воды добавить каплю раствора желатина.
– Для выявления структур клетки необходимо в каплю воды добавить каплю раствора эозина.
– После этого возьмите покровное стекло (обязательно за боковые грани, иначе оставите отпечатки пальцев на поверхности стекла) и опустите одну из боковых граней покровного стекла к краю анализируемой капли, так чтобы капля растеклась вдоль бокового края.
– Затем медленно опустить покровное стекло на каплю воды.
– Поместите препарат на предметный столик микроскопа и начните работу.
16. Правильно оформите результаты Ваших наблюдений, зарисовывая увиденное. При зарисовке следует придерживаться ряда правил.
– Рисовать можно только на одной стороне листа, так как рисунки, сделанные на обеих сторонах, накладываются друг на друга и со временем портятся.
– Рисунок должен быть крупным, детали рисунка хорошо различимы. На одной странице не должно быть более 3–4 рисунков.
– Главное требование к рисунку – правильное отображение формы, соотношения объема и размеров (длина, ширина и др.) отдельных частей и целого. Чтобы легче добиться этого, сначала нарисуйте общий контур объекта (крупно), затем внутри контура слегка наметьте контуры остальных деталей и после этого вырисовывайте их четко.
– Правильное отражение соотношения размеров изучаемого объекта позволит выполнить и второе требование – показать индивидуальные особенности объекта, т. е. зарисовать не абстрактную, а конкретную клетку.
– Вокруг рисунка не нужно рисовать контуров поля зрения микроскопа.
– К каждому рисунку обязательно должны быть сделаны обозначения его отдельных частей. Обозначения можно делать двумя способами:
а) к отдельным частям объекта ставят стрелочки и против каждой пишут название. Все надписи должны быть расположены параллельно друг другу;
б) к отдельным частям объекта ставят стрелочки и против каждой пишут определенную цифру, затем сбоку от рисунка или под ним столбиком по вертикали пишут цифры, а против цифр – название.
17. Подготовьте отчет, перечислить выявленные виды простейших.
Практическая работа 5
Биологическая индикация природных водоемов
по сапробности
Цель работы: познакомиться с методикой биотестирования водоемов, выявить комплексы инфузорий, определяющие степень сапробности водоема.
Теоретические положения
Биологический метод оценки степени загрязнения природных вод был разработан в 1902 г. немецкими исследователями Кольквитцем (ботаник) и Марссоном (зоолог) (Основы экогеологии…, 2004).
У них были предшественники, которые указывали на приуроченность определенных организмов к загрязненным водам, но стройную систему предложили именно эти два автора, проделавшие огромную предварительную работу. Они исследовали свыше 800 различных водоемов: от чистых высокогорных озер до сточных коллекторов – и разделили их на три категории или ступени, в соответствии с процессами, протекающими в водоеме при естественном самоочищении.
Сильно загрязненные воды с резким преобладанием восстановительных процессов – полисапробная зона (гр. poly много, sapros гнилой).
Воды, в которых восстановительные процессы прекратились и начались окислительные, с постепенным преобладанием последних – мезосапробная зона (гр. mesos средний).
Воды, в которых наблюдается полное окисление поступавшего органического вещества – олигосапробная зона (гр. oligos незначительный).
Позднее мезосапробную зону разделили на две:
а-мезосапробную, более загрязненную, близкую к полисапробной,
β-мезосапробную, приближающуюся к олигосапробной.
Затем была введена еще катаробная зона (гр. katharos чистый), под которой подразумевалась абсолютно чистая вода, не содержащая органических веществ.
Таким образом, была создана система из 5 зон или степеней сапробности, характеризующая процесс самоочищения от крайней степени загрязнения до постепенно возрастающей чистоты воды.
В каждой из зон сапробности развивается присущий ей комплекс животных и растительных организмов, способных существовать в данных
условиях, которые и были названы авторами этой системы сапробными организмами или сапробионты.
Таким образом, по составу и количеству сапробионтов можно установить степень загрязнения того участка водоема, в котором они обитают.
Кольквитд и Марссон на основании своих исследований составили списки показательных организмов для каждой из зон сапробности, выделив около 1000 организмов-индикаторов. Они же одновременно являются и активными агентами самоочищения вод.
Эта система является экологической, так как рассматривает флору и фауну водоемов в тесной связи с условиями окружающей среды.
Поступающие в водоем загрязнения в результате самоочистительной способности водоемов постепенно разбавляются и разрушаются. Деструкция загрязнений протекает постепенно и в связи с этим постепенно восстанавливаются в водоеме условия, которые были в нем до поступления сточных вод. Процесс этот весьма длительный, и зона загрязнения в реке может захватывать десятки и сотни километров. Размер зоны зависит от соотношения объема сточных и речных вод, концентрации и качества загрязняющих веществ, скорости течения и других причин.
В зависимости от того, насколько сильно загрязнен водоем и насколько в нем прошли процессы самоочищения, водоемы и их отдельные участки подразделяются на зоны (табл. 3.5).
Таблица 3.5
Уровни сапробности и трофности вод
Уровень сапробности
|
Ступень трофности
|
Ведущие организмы из числа инфузорий
|
Полисапробный: очень сильное органическое загрязнение, мало кислорода, много бактерий; видовой состав беден, численность особей высокая
|
Политрофная:
очень большой
избыток питательных веществ
(гниющие воды)
|
Caenomorpha,
Colpidium, Epalxella, Lacrymaria, Metopus, Vorticella
|
ά-мезосапробный: значительное органическое загрязнение, мало кислорода, видовой состав богат, численность особей высокая
|
Эвтрофная:
много питательных веществ, много
фотосинтезирующих протистов
|
Carchesium,
Chilodonella,
Paramecium,
Urocentrum
|
β-мезосапробный: слабое органическое загрязнение, много кислорода; видовой состав богат
|
Euplotes, Halteria,
Spirostomum, Stentor
|
Олигосапрробный: чистая, богатая кислородом вода; видовой состав беден, численность особей низкая
|
Олиготрофная:
мало питательных
веществ
|
Dileptus, Strobilidium, Thuricola
|
При загрязнении водоема в нем изменяются физико-химические условия. При этом одни формы гидробионтов погибают, другие получают преимущества для свободного развития, и в результате происходит смена биоценоза на загрязненном участке. Многие гидробионты способны развиваться только в воде определенного качества, и поэтому обнаруживают четко выраженную приспособленность к определенным зонам загрязнения.
Полисапробная зона (р) характеризуется большим содержанием нестойких органических веществ и наличием продуктов их анаэробного распада. В воде в изобилии присутствуют белковые вещества. БПК (биологическое потребление кислорода) составляет десятки миллиграммов на литр. Фотосинтез отсутствует. Кислород может поступать в воду только за счет атмосферной реаэрации, и так как он полностью потребляется на окисление в поверхностных слоях, то в воде он практически не обнаруживается. Вода содержит метан и сероводород.
Для этой зоны характерно наличие большого числа сапрофитной микрофлоры, представленной сотнями тысяч и даже миллионами клеток в 1 мл. В донных отложениях кислород отсутствует, содержится много органического детрита, протекают восстановительные процессы, железо находится в форме FeS. Ил имеет черную окраску с запахом сероводорода. В этой зоне в массе развиваются растительные организмы с гетеротрофным типом питания: сапрофитные бактерии, нитчатые бактерии, серные бактерии, из простейших – инфузории, бесцветные жгутиковые (рис. 3.7).
Рис. 3.7. Организмы полисапробной зоны: 1–11 – нитчатые бактерии; 12–14 – жгутиконосцы; 15–23 – инфузории
Альфа-мезосапробная зона (а – т). В этой зоне начинается аэробный распад органических веществ с образованием аммиака, содержится много свободной углекислоты, кислород присутствует в малых количествах. Метан и сероводород отсутствуют. Количество загрязнения, определяемого по БПК, все еще очень велико: десятки миллиграммов на литр. Количество сапрофитных бактерий составляет десятки и сотни тысяч в 1 мл.
В воде и донных отложениях протекают окислительно-восстановительные процессы; железо трехвалентное и двухвалентное, ил сероватой окраски. В а – т зоне развиваются организмы, обладающие большой выносливостью к недостатку кислорода и большому содержанию углекислоты. Преобладают растительные организмы с гетеротрофным и миксотрофным питанием. Отдельные организмы имеют массовое развитие. Обильно развиваются нитчатые бактерии, грибы, водоросли. Из животных организмов обильны обрастания сидячими инфузориями (Carchesium), встречаются коловратки, много окрашенных и бесцветных жгутиковых (рис. 3.8).
Рис. 3.8. Альфа-мезосапробные организмы:
1–3 – бактерии; 4 – одноклеточная водоросль; 5–6 – многоклеточные водоросли; 7–13 – инфузории
Бета-мезосапробная зона (β – m) отмечается в водоемах, почти освободившихся от нестойких органических веществ, распад которых дошел до образования окисленных продуктов (полная минерализация).
Количество сапрофитных бактерий составляет тысячи клеток в 1 мл и резко увеличивается в период отмирания водной растительности. Концентрация кислорода и углекислоты сильно колеблется в течение суток, в дневные часы содержание кислорода в воде доходит до пресыщения, и углекислота может полностью исчезать. В ночные часы наблюдается дефицит кислорода в воде.
В иле много органического детрита, интенсивно протекают окислительные процессы, ил желтой окраски.
В этой зоне большое разнообразие животных и растительных организмов. В массе развиваются растительные организмы с автотрофным питанием, наблюдается цветение воды многими представителями фитопланктона. В обрастаниях обычны зеленые нитчатки и эпифитные диатомеи; в иле – черви, личинки хирономид, моллюски (рис. 3.9).
Рис. 3.9. Бета-мезосапробные организмы: 1–3 – нитчатые бактерии; 4 – зеленые водоросли; 5–6 – водоросли; 7–8 – жгутиковые; 9–10 – инфузории; 11–12 – водоросли; 15 – кольчатые черви: 18–19 – грибы
Олигосапробная зона (о) характеризует практически чистые водоемы с незначительным содержанием нестойких органических веществ и небольшим количеством продуктов их минерализации.
Содержание кислорода и углекислоты не претерпевает заметных колебаний в дневные и ночные часы суток. Цветение водорослей, как правило, не наблюдается. В донных отложениях содержится мало органического детрита, автотрофных микроорганизмов и бентосных животных (червей, личинок хирономид и моллюсков).
Показателями большой чистоты воды в этой зоне являются некоторые красные водоросли и водные мхи (рис. 3.10).
Рис. 3.10. Олигосапробные организмы:
1, 2, 3, 6, 10, 13, 14 – водоросли; 4, 8, 12 – инфузории; 7 – кишечнополостные; 11 – личинка
По мере развития процесса биологического самоочищения возрастает видовое разнообразие, но численность каждого отдельного вида уменьшается:
в олигосапробной зоне разнообразие видов достигает максимума, зато численность отдельных видов невелика.
для полисапробной зоны характерны небольшое число видов и очень высокая численность каждого отдельного вида.
Система сапробных организмов полностью отвечает экологическому принципу Тинеманна: «Чем больше условия существования данного местообитания отличаются от оптимальных для большинства видов, тем беднее по видовому разнообразию становится биоценоз и тем характернее и многочисленнее – каждый отдельный вид» (Основы экогеологии…, 2004).
Система Кольквитца и Марссона сразу получила широкое распространение и была использована для оценки санитарного состояния водоемов, особенно в Европе и России. В нашей стране создалась школа санитарных гидробиологов (Я. Я. Никитинский, Г. И. Долгов, С. Н. Строганов, С. М. Вислоух и др.), успешно применявших и развивавших систему санитарно-биологического анализа, т. е. состояние водоема определялось на основе животных и растительных организмов.
Кольквитц и Марссон подчеркивали, что основное значение следует придавать не отдельным видам, а биоценозам, т. е. сообществу показательных организмов.
Очень чистые водоемы практически не несут следов воздействия человека. В России к таким водоемам могут быть отнесены многие озера и реки Сибири, севера Дальнего Востока, а на европейской территории – Ладожское и Онежское озера, Рыбинское водохранилище, некоторые северные реки. В этих водоемах насыщение воды кислородом достигает 95 %, БПК не превышает 1 мг/л, а взвешенные вещества – 3 мг/л. Вода в очень чистых водоемах пригодна для всех видов водопользования.
Водоемы, относимые к категории чистых, по химическим показателям почти не отличаются от очень чистых, но следы влияния деятельности человека проявляются, прежде всего, в увеличении количества сапрофитной микрофлоры в воде. Воды водоемов второго класса также пригодны для всех видов водопользования.
Умеренно загрязненные воды характеризуются повышенным содержанием органических веществ, ионов хлора и солей аммония. Они несут в себе признаки загрязнения поверхностным стоком и бытовыми водами. Умеренно загрязненные воды после соответствующей очистки пригодны для хозяйственно-питьевого использования, разведения некоторых видов рыб и для прочих видов водопользования.
К категории загрязненных отнесены реки и озера, природные свойства которых значительно изменены в результате поступления в них сточных вод. В зимний период при образовании ледяного покрова на загрязненных участках водоема могут создаваться анаэробные условия. Загрязненные воды не пригодны для питьевого, хозяйственно – бытового и спортивного назначения, а также для рыбоводства. Они могут быть использованы, да и то с ограничениями, в некоторых производственных процессах, для орошения и судоходства. В странах Западной Европы, при остром дефиците воды, загрязненные воды используют для хозяйственно-питьевого назначения, применяя при этом сложные способы очистки.
В грязных и очень грязных водоемах природные свойства воды сильно изменены. В летний период вода этих водоемов издает неприятные запахи. Повышенное содержание агрессивной углекислоты и сернистых соединений в воде грязных водоемов оказывает вредное воздействие на обшивку судов и портовые сооружения, вследствие чего эти водоемы ограниченно пригодны для судоходства. Для орошения воды грязных водоемов могут быть использованы с ограничениями, не под все культуры.
Для оценки степени загрязнения водоема необходимо пользоваться средними данными, собранными в период наиболее критического состояния водоема. Например, наименьшая концентрация растворенного кислорода наблюдается летом или в период ледостава, температура наиболее высокая – летом. По многим показателям наиболее неблагоприятные условия создаются зимой. Показатели в этот период и принимаются за основу при оценке степени загрязненности водоема.
Порядок выполнения работы
1. На предметное стекло нанести каплю воды, взятую из природного водоема
2. Для замедления движения простейших в каплю воды добавить небольшую каплю раствора желатина и накрыть покровным стеклом.
3. Поместить препарат на предметный столик микроскопа, используя винты предметного столика постепенно перемещать препарат и регистрировать виды простейших.
4. Определение видов производить по описаниям инфузорий (практическая работа 4), фотографиям (прил. 1)
5. Провести микроскопирование проб воды из разных природных водоемов, подверженных в различной степени антропогенному воздействию.
6. Заполнить табл. 3.6.
7. Подготовить отчет с описанием индикаторных организмов, заполненной табл. 3.6 и заключением о степени сапробности водоема для каждого образца.
Таблица 3.6
Сапробность природных водоемов
по видовому составу инфузорий
Природный
водоем
|
Равноресничные инфузории
|
Кругоресничные инфузории
|
Спиральноресничные
инфузории
|
Зона
сапробности
|
виды
|
числен.
|
виды
|
числен.
|
виды
|
числен.
|
|
1.
|
1.
2.
3.
и др.
|
|
|
|
Библиографический список
Чура Н.Н. Техногенный риск. – М.: Кнорус, 2011. – 229 с.
Тимофеева С.С.. Шешуков Ю.В. Производственная безопасность. – М. : ФОРУМ:ИНФРА, 2014. – 336 с.
Тимофеева С.С. Ноксология. – М. : ФОРУМ:ИНФРА , 2014. – 160 с.
Медведева С.А.Тимофеева С.С. Экология техносферы. – М. : ФОРУМ:ИНФРА, 2014. – 200 с.
Тимофеева С.С., Хамидуллина Е.А. Оценка техногенных рисков. М.: ФОРУМ:ИНФРА, 2015. – 210 с.
Мелехова О.П., Сарапульцева Е.И. Биологический контроль окружающей среды: биоиндикация и биотестирование : учеб. пособие. – М. : Издательский дом «Академия», 2010. – 288 c.
Ветошкин А.Г. Теоретические основы защиты окружающей среды : учеб. пособие. – М. : Высш.шк., 2008. – 397 с.
Романовский В.Л., Муравьева Е.В. Прикладная техносферная рискология. – Казань, 2007. – 355 с.
Дятлов С.Е. Роль и место биотестирования в комплексном мониторинге морской cреды // Экология моря. – 2000, вып.51. – С. 83-87.
Крайнюкова А.Н. Биотестирование в охране вод от загрязнения // Методы биотестирования вод. – Черноголовка, 1988. – С. 4-14.
Семенченко В.П. Принципы и системы биоиндикации текучих вод. – Минск : "Орех", 2004. – 125 с.
http://www.microbiotests.be/publications/publications.html
http://www.microbiotests.be/
http://www.microbiotests.be/newsletters/Toxkit%20Newsletter%201.pdf
ГОСТ Р ИСО 14001–2007. Системы экологического менеджмента. Требования и руководство по применению. – Введ. 01.10.2007. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2007. – 26 с.
ГОСТ Р 54134–2010. Экологический менеджмент. Руководство по применению организационных мер безопасности и оценки рисков. Выбросы парниковых газов. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2011. – 21 с.
ГОСТ Р 54135–2010. Экологический менеджмент. Руководство по применению организационных мер безопасности и оценки рисков. Защита экологических природных зон. Общие аспекты и мониторинг. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2011. – 44 с.
ГОСТ Р 54139–2010. Экологический менеджмент. Руководство по применению организационных мер безопасности и оценки рисков. Изменение климата. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 33 с.
ГОСТ Р 14.09–2005. Экологический менеджмент. Руководство по оценке риска в области экологического менеджмента. – Введ. 01.01.2007. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2010. – 40 с.
ГОСТ Р ИСО 14004–2007. Системы экологического менеджмента. Общее руководство по принципам, системам и методам обеспечения функционирования. – Введ. 01.01.2009. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2009. – 36 с.
ГОСТ Р ИСО 14031–2001. Управление окружающей средой. Оценивание экологической эффективности. Общие требования. – Введ. 01.10.2001. – М.: ГОССТАНДАРТ РОССИИ, 2009. – 26 с.
ГОСТ Р 51897–2011. Руководство ИСО 73:2009 Менеджмент риска. Термины и определения. – Введ. 01.12.2012. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 16 с.
ГОСТ Р ИСО 14015–2007. Экологический менеджмент Экологическая оценка участков и организаций. – Введ. 01.01.2010. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2010. – 19 с.
ГОСТ Р 51901.1–2002. Менеджмент риска. Анализ риска технологических систем. – Введ. 2003.09.01. М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2003. – 22 с.
ГОСТ Р 51901.4–2005 (МЭК 62198:2001). Менеджмент риска. Руководство по применению при проектировании. – Введ. 06.09.2005. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2005. – 12 с.
ГОСТ Р 51901.10–2009/ISO/TS 16732:2005. Национальный стандарт Российской Федерации. Менеджмент риска. Процедуры управления пожарным риском на предприятии. – Введ. 15.12.2009. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2010. – 20 с.
ГОСТ Р 12.0.007-2009. Система стандартов безопасности труда. Система управления охраной труда в организации. Общие требования по разработке, применению, оценке и совершенствованию. – Введ. 21.04.2009. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2009. – 42 с.
ГОСТ Р 12.0.010-2009. Система стандартов безопасности труда. Системы управления охраной труда. Определение опасностей и оценка рисков. – Введ. 10.12.2009. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2011. – 20 с.
ГОСТ Р 51901.12–2007 (МЭК 60812:2006). Менеджмент риска. Метод анализа видов и последствий отказов. – Введ. 01.09.2008. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2008. – 36 с.
ГОСТ Р 54141–2010. Менеджмент рисков. Руководство по применению организационных мер безопасности и оценки рисков. Эталонные сценарии инцидентов. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 28 с.
ГОСТ Р 54142–2010. Менеджмент рисков. Руководство по применению организационных мер безопасности и оценки рисков. Методология построения универсального дерева событий. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 34 с.
ГОСТ Р 54144–2010. Менеджмент рисков. Руководство по применению организационных мер безопасности и оценки рисков. Идентификация инцидентов. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 28 с.
ГОСТ Р 54145–2010. Менеджмент рисков. Руководство по применению организационных мер безопасности и оценки рисков. Общая методология. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 24 с.
ГОСТ Р ИСО/МЭК 31010–2011. Менеджмент риска. Методы оценки риска. – Введ. 01.12.2012. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 74 с.
ГОСТ Р ИСО 31000-2010. Менеджмент риска. Принципы и руководство. – Введ. 31.08.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 28 с.
ГОСТ Р 54138–2010. Проведение самооценки деятельности предприятий на соответствие систем менеджмента качества предприятий требованиям стандарта ГОСТ Р ИСО 9001–2008. – Введ. 01.09.2011. – М.: ФГУП "СТАНДАРТИНФОРМ", 2012. – 59 с.
Приложение
Фотографии основных видов инфузорий
|
|
Рис. 1. Колепс гиртус
|
Рис. 2. Дилептус ансер
|
|
|
|
|
Рис. 3. Спатидиум
поркулюс
|
Рис. 4. Кольпода кукулюс
|
|
|
|
|
Рис. 5. Кольпода мапази
|
Рис. 6. Кольпода штейни
|
|
|
Рис. 7. Кольпода
аспера
|
Рис. 8. Инфузория-туфелька
|
|
|
|
|
Рис. 9. Кольпидиум
кольпода
|
Рис. 10. Уронема маринум
|
|
|
|
|
Рис. 11. Вортицелла
конваллярия Сувойка
|
Рис. 12. Стромбидиум
|
|
|
Рис. 13. Уролептус
писцис
|
Рис. 14. Окситриха
реллионелла
|
|
|
|
|
Рис. 15. Стилонихия
митилюс
|
Рис. 16. Аспидиска
костата
|
Оглавление
Введение 3
Раздел 1. Теоретические основы прикладной техносферной рискологии 5
1.1. Техногенез и глобальное загрязнение 5
1.2. Источники загрязнения атмосферы 18
1.3. Источники загрязнения гидросферы 25
1.4. Источники загрязнения литосферы 35
1.5. Основные понятия рискологии 47
1.5.1. Понятие, происхождение и назначение риска 50
1.5.2. Общее содержание и структура риска 57
1.5.3. Классификация рисков 63
1.6. Методологический аппарат анализа риска 66
1.7. Методы анализа опасностей 77
1.8. Методы количественного анализа риска аварий 103
1.9. Методы оценки последствий аварий (ущерба) 128
1.10. Мониторинг и управление рисками 142
Раздел 2. Современные методы мониторинга: биоиндикация
и биотестирование 144
2.1. Биоиндикация 144
2.2. Биотестирование как метод оценки токсичности
химических веществ и природных сред 161
Раздел 3. Практические работы 178
Практическая работа 1. Биоиндикация загрязнения
атмосферного воздуха с помощью лишайников 178
Практическая работа 2. Биотестирование загрязнения воды
с помощью водных растений 182
Практическая работа 3. Биотестирование загрязнения
почвы (отходов) по всхожести семян редиса 187
Практическая работа 4. Биоиндикация природных водоемов 193
Практическая работа 5. Биологическая индикация
природных водоемов по сапробности 204
Библиографический список 212
Приложение 215
Учебное издание
Тимофеева
Светлана Семёновна
ПРИКЛАДНАЯ ТЕХНОСФЕРНАЯ РИСКОЛОГИЯ
Учебное пособие
Редактор Н.В. Махнёва
|
