личинок и молоди на ЛРЗ Сахалинской области
На ранних этапах своего развития тихоокеанские лососи наиболее уязвимы к различным видам заболеваний и изучение этих заболеваний является неотъемлемой частью рыбоводства. Благодаря этому мы можем выращивать молодь с гораздо меньшим отходом, более упитанную и способную, будучи уже выпущенной в море, расти здоровой и высокотолерантной [54].
На Сахалинских ЛРЗ, где используют современные биотехнологии искусственного воспроизводства тихоокеанских лососей, практически не наблюдается массовой гибели рыбоводной продукции по причине различных заболеваний. Но опасность заражения сохраняется, особенно на тех предприятиях, которые в качестве источника водоснабжения используют речную воду. Наиболее опасными заболеваниями рыбоводной продукции на этапе эмбрионального развития являются сапролегниоз и расслабление оболочек икры, а на этапах подращивания личинок и выращивания молоди – триходиниоз, хилодонеллез, микоз плавательного пузыря, аэромоноз и газопузырьковая болезнь.
Сапролегниоз – заболевание рыбы и икры грибной этиологии, широко распространенное в рыбоводных хозяйствах разного профиля, в том числе и на ЛРЗ. Сапролегниоз вызывается плесневыми грибами из порядка сапролегниевых (Saprolegniales), относящимися к нескольким родам: Achlya, Aphonomyces, Dictyuchus, Leptolegnia, Saprolegnia и др. Наиболее распространенными и патогенными являются следующие виды: Ach. flagellate, Aph. laevis, D. monosporus, S. ferax, S. mixta, S. parasitica, Achlya flagellate.
Сапролегниоз распространен повсеместно, так как возбудители этой болезни, являясь сапрофитными организмами, постоянно присутствуют в воде и грунтах.Заболевание может возникать в любое время года, однако каждый вид гриба обладает определенными требованиями к условиям среды и, в частности, имеет свой температурный оптимум. Установлено, что максимум развития для S.мixta и S. ferax приходится на весну и осень, S. monica – на зиму, Ach. flagellate на лето, S. parasitica встречается в течение всего года.
Болезнь у рыб может протекать длительно, особенно при низкой температуре воды, вызывая повышенную гибель. Сапролегниоз часто сопутствует ряду инфекций и инвазий, осложняя их. Факторами, способствующими развитию болезни на рыбе, являются травмы, стресс, низкая температура воды (ниже 1оС), высокий показатель рН (более 8,3), наличие в воде рыбоводных сооружений большого количества органических веществ.
Интенсивность развития грибов на икре зависит от процента травмированной и неоплодотворенной – то есть, мертвой икры. Сапролегниоз проявляется в виде ватообразного разрастания гриба на различных участках поверхности тела, плавниках, жабрах, реже на внутренних органах. Цвет мицелия белый, но может варьировать от желтоватого до коричневатого в зависимости от цвета осаждаемых на нем взвешанных в воде частиц.
По мере развития болезни рыба становится вялой, слабо реагирует на внешние раздражители. Присутствие на теле рыбы светлых грибковых пятен делает ее более заметной и затрудняет ее движение.
Здоровая, нормально развивающаяся икра, как правило, заражается сапролегниозом при контакте с мертвой пораженной икрой. Установлено, что у рыб с длительным сроком инкубации икры возможно заражение и живых развивающихся икринок. Под воздействием гриба происходит разрыхление поверхности оболочек икры, их деструкция, вакуолизация. В ряде случаев гифы инвазируют во внутреннее содержимое икринки.
Диагноз на сапролегниоз ставят на основании эпизоотологических данных, клинических признаков и обнаружении гифов грибов на рыбе и икре. Обнаружение десятков больных рыб в одном рыбоводном сооружении или большого числа пораженных икринок в инкубационном аппарате свидетельствует о наличии болезни. При постановке диагноза следует выяснить первичную причину возникновения заболевания, учесть факторы, способствующие ее возникновению, и в случаях гибели исключить сопутствующую инвазию или инфекцию [56; 95].
В целях профилактики сапролегниоза икры мы рекомендуем выполнять ряд мероприятий:
1. Строго соблюдать технологию получения и оплодотворения икры и содержания производителей. Избегать стресса и других неблагоприятных факторов, снижающих иммунно-физиологическое состояние маточного стада, особенно в преднерестовый период.
2. Лечебно-профилактическую обработку икры лососевых проводят в соответствии с действующими ветеринарно-санитарными правилами для ЛРЗ.
3. Икру с момента обнаружения сапролегнии в течение всего периода инкубации (кроме чувствительных стадий) необходимо систематически обрабатывать в растворах следующих препаратов:
Формальдегид – 0, 2–0, 5 % – 3 мин (через 10 дней);
Малахитовый зеленый – 1:15000 – 3 мин (через 10 дней); 1:200000 – 30 мин (через 3 дня).
4. Молодь рыб при появлении сапролегниоза следует обрабатывать в растворе малахитового зеленого – 1:800000 – 5–10 мин, или формалина 1:4000 4–5 мин, 1:20000 – 30 мин., производителей рыб – в растворе малахитового зеленого – 1:200000 – 20 мин.
5. При работе с икрой и молодью рыб на всех этапах рыбоводного цикла необходимо соблюдать исключительную осторожность во избежание их травмирования [95; 96].
Расслабление («лопание») оболочек икры тихоокеанских лососей наблюдается иногда в период ее инкубации и рассматривается как вторичное явление.
Первопричиной болезни является нарушение условий инкубации икры, ее травмирование и возникновение стрессовых ситуаций в последующий период ее развития [17; 153]. На поврежденных участках икринок поселяются миколитические или грамотрицательные бактерии, а также низшие грибы, близкие к роду Rhizophidium. Постепенно мицелий гриба врастает в оболочки икринок и разрушает их. Помимо этого, неблагоприятные условия газообмена икринок в период инкубации вызывают изменения желез вылупления. В результате наступает раннее вылупление несформировавшихся эмбрионов и их гибель. Диагноз заболевания устанавливают на основании клинических признаков, эпизоотологических данных и результатов микроскопического исследования оболочек и содержимого икринок [12].
Для профилактики болезни проводят обработку икры в растворах ряда химических реагентов:
– формальдегид 0,5 % – 3–5 мин;
– малахитовый зеленый – 1:15000 – 3–5 мин.
В инкубационных аппаратах необходимо соблюдать оптимальные условия среды, обеспечивая необходимую проточность, содержание кислорода и температуру воды. Инкубационные аппараты, рыбоводный инвентарь необходимо дезинфицировать раствором формалина [55; 56].
Возбудителями триходиниоза являются инфузории из семейства Urceolariidae. Локализуются триходины в основном на коже и плавниках молоди кеты и горбуши, а при высокой степени инвазии – и на глазных яблоках. Среди возбудителей заболевания на рыбоводных заводах Сахалинской области широкое распространение имели два вида триходин: Trichodina truttae и Т. californica. Т. truttae регистрировалась на молоди лососевых с начала 1960-х годов [167; 169].
Возбудители распространяются с зараженной рыбой или водой, и наибольшее число рыб, больных триходинозом, имеет место на хозяйствах с речной водоподачей, потому что дикие популяции служат источником заражения [168]. К триходинозу восприимчивы разные виды и разные возрастные группы рыб. Наиболее подвержены заболеванию младшие возраста. B связи с этим триходины очень опасны для выращиваемой на рыбоводных заводах молоди лососевых, где они встречались регулярно в прошлые годы с очень высокой численностью [11].
Несмотря на совершенствование биотехнологии искусственного разведения тихоокеанских лососей проблема триходиноза на рыбоводных заводах Сахалина остается актуальной и в настоящее время представляет определенную опасность для молоди лососевых рыб.
Меры борьбы и профилактики с триходинами у нас в стране и за рубежом разработаны и освещены в литературе достаточно широко. В частности, для дальневосточных рыбоводных заводов они подробно изложены в работах Е.А. Богдановой, Г.П. Вяловой и И.М. Золотаревой [46]. В своей монографии Е.А. Богданова [11] указывает, что триходиниоз до 1960 г. был одним из самых распространенных заболеваний молоди лососевых на рыбоводных заводах Сахалинской области (Рисунок 32 Приложения Б).
Применение разработанных мер борьбы и профилактики привело к резкому снижению заражения. В настоящее время благополучие рыбоводных заводов по триходинозу поддерживается за счет введения в биотехнику плановых обработок молоди один раз в декаду и по показаниям. Установленным по нашим исследованиям показанием к обработке является интенсивность инвазии более 5 паразитов на одного малька. Паразитологические обследования молоди на каждом заводе необходимо проводить не реже одного раза в 10 дней. При триходинозе на сахалинских рыбоводных заводах традиционно применяют формалин в разведении 100 мг/л в течение 15–20 минут и малахитовый зеленый 1,4 мг/л в течение 10 минут или 1,0 мг/л в течение 15 минут.
Однако некоторые исследователи указывают на токсичность для рыб малахитовой зелени и формалина высоких концентраций [24]. Появился также ряд работ, указывающих на возможность применения значительно меньших концентраций этих препаратов с одновременным увеличением экспозиции до нескольких часов, а также ведется поиск менее токсических веществ. В том числе и течение двух лет проводились экспериментальные обработки молоди лососевых органическими красителями фиолетовым «К» и основным ярко-зеленым против триходин и сапролегнии в условиях Сахалинской области. Эти препараты давно и успешно применяют для профилактических и лечебных обработок прудовых рыб. Они губительно действуют на ряд эктопаразитов, включая триходин, или нарушают их нормальное развитие.
При современной интенсификации рыбоводства обработка икры молоди лососевых рыб является неотъемлемой частью биотехники. В условиях Сахалина наряду с принятыми и утвержденными к использованию препаратами можно рекомендовать фиолетовый «К» – препарат эффективный и менее токсичный [23].
Органический краситель малахитовый зеленый реже применяется в последнее время, поскольку имеются сведения о его возможном канцерогенном эффекте, и кроме того, при развешивании его для приготовления растворов нужной концентрации, он сильно пылит. Раствор формальдегида все еще широко используется на наших рыбоводных заводах, но он также имеет свои недостатки: концентрированный (40 %-ный) формалин имеет густую консистенцию, и для его разведения в нужной концентрации требуется возгонка. В разработке находится новое лечебно-профилактическое средство для применения в условиях лососевых рыбоводных заводов: пероксид водорода (H2O2). Результаты данной экспериментальной работы будут в ближайшее время внедрены на практике.
Возбудитель хилодонеллеза Chilodonella piscicola относится к ресничным инфузориям. При тяжелой форме хилодонеллеза на поверхности тела рыбы появляется голубовато – серый налет. Заражение Ch. piscicola часто вызывает эпизоотии и служит причиной хронической смертности симы на начальном этапе питания на рыбоводных заводах Японии [170]. Этот паразит встречается также на жабрах диких рыб – таких, как сима, корюшка.
Многие авторы предполагают, что паразит является причиной заболевания только после значительного стресса хозяина [169]. Решающее влияние на численность хилодонеллы оказывает физиологическое состояние и, в первую очередь, упитанность рыбы. В результате голодания наступает отмирание клеток кожного эпителия, который является наиболее благоприятным субстратом для размножения паразита [7]. Это подтверждается также наблюдениями на рыбоводных заводах Сахалинской области, где наибольшая зараженность хилодонеллой была отмечена у погибшей молоди (суточный отход) и колебалась в пределах 1,0–3,1 экз./рыбу при экстенсивности 20–100 %. На живой молоди хилодонеллы встречаются единично при 90 % экстенсивности.
Большое значение в эпизоотологии хилодонеллеза имеет количество заразного начала в цехах-питомниках рыбоводных заводов. Хилодонеллез сначала возникает на плохо упитанной, дистрофичной и отстающей в росте молоди, в дальнейшем увеличение заразного начала приводит к заражению и хорошо упитанных рыб, что может вызвать их гибель. На рыбоводных заводах Сахалина, как правило, наблюдается смешанная инвазия триходин и хилодонелл. В связи с этим меры борьбы и профилактики хилодонеллеза те же, что и для триходиниоза [24; 25]. Кроме того, введение в технологическую схему обязательного кормления искусственными кормами молоди горбуши и кеты, перед выпуском в естественную среду обитания, практически полностью исключило появление хилодонелеза, как опасного заболевания в рыбоводной практике.
Мы считаем, что для профилактики заболеваний следует осуществляют следующие мероприятия:
1. Воду, поступающую в инкубационный цех, предварительно пропускать через песчано-гравийные фильтры.
2. Систематически очищать каналы от ила, остатков корма, дезинфицировать, не допускать увеличения в них плотности посадки рыб.
3. Соблюдать оптимальную проточность воды.
4. Основные подрусловый и грунтовый источники водоснабжения изначально исключают попадание в водосистему рыбоводного предприятия патогенного начала.
Кроме обеспечения правильного водоснабжения, важными профилактическими мероприятиями, по нашим наблюдениям, являются следующие:
а) сохранение безукоризненной чистоты оборудования и всех производственных помещений;
б) тщательная очистка питомников от ила;
в) борьба с проникновением в инкубаторы и питомники сорной рыбы, являющейся переносчиком различных заболеваний;
г) дезинфекция оборудования и помещений заводов, включая грунт питомников, перед каждым производственным сезоном;
д) промывка икры от осаждающегося на неё ила и периодическое проведение предупредительной дезинфекции икры;
е) своевременно и правильно организованное кормление личинок и молоди, повышающие её жизнестойкость.
|
